Ulyanovsk Medico-biological Journal

PHYSIOLOGY

Download  article

DOI 10.34014/2227-1848-2020-4-122-132

EFFECT OF LOW INTENSITY LASER THERAPY (WAVELENGTH 1265 NM) ON THE LEVEL OF ACTIVE OXYGEN AND LIPID PEROXIDATION-ANTIOXIDANT SYSTEM IN CHO-K1 AND A875 CELLS

 

A.V. Khokhlova, L.V. Poludnyakova, A.Yu. Fedotova, D.A. Stolyarov, A.K. Gil'mutdinova, E.S. Pogodina, Yu.V. Saenko, I.I. Antoneeva, E.A. Beloborodov

Ulyanovsk State University, Ulyanovsk, Russia

 

Near-infrared laser therapy has a significantly greater ability to penetrate living tissues compared to visible range optical radiation and often has the opposite effect on normal and malignant cells, thus being a promising tool for superficial neoplasm therapy. However, the mechanisms underlying the interaction between laser and biological structures can be of a different nature due to the chosen wavelength, power, and other radiation parameters.

The aim of the paper is to study the efficacy of laser radiation with a wavelength of 1265 nm (9.45–18.9 J/cm2) on the generation of reactive oxygen species (ROS), the enzyme level of the antioxidant defence (AOD) and lipid peroxidation (LPO) in normal and cancer cells of Chinese hamster ovary epithelial cell line CHO-K1 and human melanoma A875.

Materials and Methods. The experiment was carried out on cell lines CHO-K1 and A875, which were submitted to laser irradiation (wavelength 1265 nm, power 4.2–100 mW) for 30–60 min. Fluorescent staining with DCFH-DA was used to study intracellular ROS concentration; ImageJ software was used for image processing. The level of LPO products and the activity of AOD enzymes were determined by biochemical methods. Statistical processing of the results was carried out using the Mann–Whitney U-test (p<0.05).

Results. The authors revealed an increase in ROS level, a decrease in superoxide dismutase and catalase activity, and a decrease in malondialdehyde level in CHO-K1 cells. An increase in catalase activity and malondialdehyde level was observed in A875 cells.

Conclusion. Laser therapy (wavelength 1265 nm) enhances ROS generation and suppresses LPO-AOD system in the noncancerous cell line CHO-K1. However, opposite irradiation effects are observed in melanoma A875 cells.

Keywords: cell culture, cancer, melanoma, low level laser therapy, infrared laser therapy, oxidative stress, mitochondria, reactive oxygen species, lipid peroxidation, antioxidant defence.

This study was supported by the Russian Foundation for Basic Research (grant № 19-415-730003 р_а).

Conflict of interest. The authors declare no conflict of interest.

 

References

  1. Gladfelter P., Darwish N.E., Mousa S.A. Current status and future direction in the management of malignant melanoma. Melanoma Res. 2017; 27 (5): 403–410.

  2. Kaprin A.D., Starinskiy V.V., Shakhzadova A.O. Sostoyanie onkologicheskoy pomoshchi naseleniyu Rossii v 2019 godu [Cancer care in Russia in 2019]. Moscow: MNIOI im. P.A. Gertsena − filial FGBU «NMITs radiologii» Minzdrava Rossii; 2020. 239 (in Russian).

  3. Gafton G.I., Anisimov V.V., Gel'fond M.L., Semiletova Yu.V., Baldueva I.A., Nekhaeva T.L., Novik A.V., Myasnyankin M.Yu. Kliniko-immunologicheskaya otsenka effektivnosti neoad"yuvantnoy fotodinamicheskoy terapii v khirurgicheskom lechenii pervichnoy melanomy kozhi [Clinical and immunological evaluation of neoadjuvant photodynamic therapy in the surgical treatment of primary skin melanoma]. Sibirskiy onkologicheskiy zhurnal. 2015; 2: 31–38 (in Russian).

  4. Peidaee P., Almansour N.M., Pirogova E. In vitro evaluation of low-intensity light radiation on murine melanoma (B16F10) cells. Med. Biol. Eng. Comput. 2016; 54 (2–3): 325–332.

  5. Chen Z., Li W., Hu X., Liu M. Irradiance plays a significant role in photobiomodulation of B16F10 melanoma cells by increasing reactive oxygen species and inhibiting mitochondrial function. Biomed. Opt. Express. 2019; 11 (1): 27–39.

  6. Ash C., Dubec M., Donne K., Bashford T. Effect of wavelength and beam width on penetration in light-tissue interaction using computational methods. Lasers Med. Sci. 2017; 32 (8): 1909–1918.

  7. Costa Carvalho J.L., de Brito A.A., de Oliveira A.P., de Castro Faria Neto H.C., Pereira T.M., de Carvalho R.A., Anatriello E., Aimbire F. The chemokines secretion and the oxidative stress are targets of low-level laser therapy in allergic lung inflammation. J. Biophotonics. 2016; 9 (11–12): 1208–1221.

  8. Firat E.T, Dağ A., Günay A., Kaya B., Karadede M.I., Kanay B.E., Ketani A., Evliyaoğlu O., Uysal E. The effects of low-level laser therapy on palatal mucoperiosteal wound healing and oxidative stress status in experimental diabetic rats. Photomed. Laser Surg. 2013; 31 (7): 315–321.

  9. Sokolovski S.G., Zolotovskaya S.A., Goltsov A., Pourreyron C., South A.P., Rafailov E.U. Infrared laser pulse triggers increased singlet oxygen production in tumour cells. Sci Rep. 2013; 3: 3484.

  10. Oliveira C.S., Turchiello R., Kowaltowski A.J., Indig G.L., Baptista M.S. Major determinants of photoinduced cell death: Subcellular localization versus photosensitization efficiency. Free Radic. Biol. Med. 2011; 51 (4): 824–833.

  11. Khokhlova A., Zolotovskii I., Stoliarov D., Vorsina S., Liamina D., Pogodina E., Fotiadi A., Saenko Y., Sokolovski S., Rafailov E. The Photobiomodulation of Vital Parameters of the Cancer Cell Culture by Low Dose of Near-IR Laser Irradiation. IEEE Journal of Selected Topics in Quantum Electronics. 2019; 25 (1): 1–10.

  12. McCloy R.A., Rogers S., Caldon C.E., Lorca T., Castro A., Burgess A. Partial inhibition of Cdk1 in G 2 phase overrides the SAC and decouples mitotic events. Cell Cycle. 2014; 13 (9): 1400–1412.

  13. Volchegorskiy V.A., Nalimov A.G., Yarovinskiy B.G. Sopostavlenie razlichnykh podkhodov k opredeleniyu produktov perekisnogo okisleniya lipidov v geptan-izopropanolovykh ekstraktakh krovi [Comparison of different approaches to lipid peroxidation product profile in heptane-isopropanol blood extracts]. Voprosy meditsinskoy khimii. 1989; 1: 127–131 (in Russian).

  14. Andreeva L.I., Kozhemyakin L.A., Kishkun A.A. Modifikatsiya metoda opredeleniya perekisey lipidov v teste s tiobarbiturovoy kislotoy [Modification of the method for determining lipid peroxides in thiobarbituric acid test]. Laboratornoe delo. 1988; 11: 41–43 (in Russian).

  15. Karpishchenko A.I. Meditsinskie laboratornye tekhnologii: rukovodstvo po klinicheskoy laboratornoy diagnostike. Vol. 2 [Medical laboratory technology: Guidelines to clinical laboratory diagnosis]. Moscow: GEOTAR-Media; 2013. 792 (in Russian).

  16. Asatiani V.S. Fermentnye metody analiza [Enzymatic methods of analysis]. Moscow; 1969: 607–610 (in Russian).

  17. Nishikimi M., Appa N., Yagi K. The occurrence of superoxide anion in the reaction of reduced phenacinemethosulfate and molecular oxygen. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1972; 46: 849–854.

  18. Anquez F., Yazidi-Belkoura I., Randoux S., Suret P., Courtade E. Cancerous cell death from sensitizer free photoactivation of singlet oxygen. Photochem Photobiol. 2012; 88 (1): 167–174. 

  19. Saenko Y.V., Glushchenko E.S., Zolotovskii I.O., Sholokhov E., Kurkov A. Mitochondrial dependent oxidative stress in cell culture induced by laser radiation at 1265 nm. Lasers Med. Sci. 2016; 31 (3): 405–413.

  20. Khokhlova A., Zolotovskii I., Stoliarov D., Vorsina S., Liamina D., Pogodina E., Fotiadi A., Saenko Y., Sokolovski S., Rafailov E. Effects of high and low level 1265 nm laser irradiation on HCT116 cancer cells. Proc. SPIE. 2019; 10861: 108610L. DOI: 10.1117/12.2509529.

  21. Pastore D., Greco M., Passarella S. Specific helium-neon laser sensitivity of the purified cytochrome c oxidase. Int. J. Radiat. Biol. 2000; 76 (6): 863–870.

  22. Eells J.T., Wong-Riley M.T., Ver Hoeve J., Henry M., Buchman E.V., Kane M.P., Gould L.J., Das R., Jett M., Hodgson B.D., Margolis D., Whelan H.T. Mitochondrial signal transduction in accelerated wound and retinal healing by near-infrared light therapy. Mitochondrion. 2004; 4 (5–6): 559–567.

  23. Wong-Riley M.T., Liang H.L., Eells J.T., Chance B., Henry M.M., Buchmann E., Kane M., Whelan H.T. Photobiomodulation directly benefits primary neurons functionally inactivated by toxins: role of cytochrome c oxidase. J. Biol. Chem. 2005; 280 (6): 4761–4771.

  24. Gonzalez-Lima F., Auchter A. Protection against neurodegeneration with low-dose methylene blue and near-infrared light. Front. Cell Neurosci. 2015; 9: 179.

  25. Khokhlova A., Zolotovskii I., Sokolovski S., Saenko Y., Rafailov E., Stoliarov D., Pogodina E., Svetukhin V., Sibirny V., Fotiadi A. The light-oxygen effect in biological cells enhanced by highly localized surface plasmon-polaritons. Sci Rep. 2020; 10 (1): 1269. DOI: 10.1038/s41598-020-58159-4.

  26. Frigo L., Luppi J.S., Favero G.M., Durnavei A.M., Penna S.C., Bjordal J.M., Bensadoun R.J., Lopes-Martins R.A. The effect of low-level laser irradiation (In-Ga-Al-AsP – 660 nm) on melanoma in vitro and in vivo. BMC Cancer. 2009; 9: 404.

  27. Andreeva N.V., Yegorov Y.E., Belyavsky A.V., Zotov K.V., Yusupov V.I., Bagratashvili V.N., Kalashnikova M.V. The effect of infrared laser irradiation on the growth of human melanoma cells in culture. Biophysics. 2016; 61 (6): 979–984.

  28. Frantsiyants E.M., Soldatkina N.V., Orlovskaya L.A., Dashkov A.V. Nekotorye pokazateli svobodnoradikal'nykh protsessov i antiokislitel'noy sistemy tkani opukholi molochnoy zhelezy i ee perifokal'noy zony pri razlichnykh variantakh techeniya raka [Some indicators of free radical processes and antioxidant system of breast tumor tissue and its perifocal zone in different types of cancer]. Opukholi zhenskoy reproduktivnoy sistemy. 2008; 2: 38–44 (in Russian).

  29. Khorsandi K., Kianmehr Z., Hosseinmardi Z., Hosseinzadeh R. Anti-cancer effect of gallic acid in presence of low level laser irradiation: ROS production and induction of apoptosis and ferroptosis. Cancer Cell Int. 2020; 20: 18.

Received 10 September 2020; accepted 09 October 2020.

 

Information about the authors

Khokhlova Anna Vyacheslavovna, Junior Researcher, Laboratory of Cellular and Molecular Biology, Research and Engineering Institute named after S.P. Kapitsa, Ulyanovsk State University. 432017, Russia,Ulyanovsk, L. Tolstoy St., 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-3976-8805.

Poludnyakova Lyudmila Viktorovna, Candidate of Sciences (Biology), Associate Professor, Chair of Physiology and Pathophysiology, Ulyanovsk State University. 432017, Russia, Ulyanovsk, L. Tolstoy St., 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-1096-444X.

Fedotova Antonina Yur'evna, Teaching Assistant, Chair of Physiology and Pathophysiology, Ulyanovsk State University. 432017, Russia, Ulyanovsk, L. Tolstoy St., 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0003-1027-8885.

Stolyarov Dmitriy Aleksandrovich, Candidate of Sciences (Physics and Mathematics), Researcher, Laboratory of Quantum Electronics and Optoelectronics, Research and Engineering Institute named after S.P. Kapitsa, Ulyanovsk State University. 432017, Russia, Ulyanovsk, L. Tolstoy St., 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0001-8635-2346.

Gil'mutdinova Aygul' Kamilovna, 4th-year Student, Ecological Department, Ulyanovsk State University. 432017, Russia, Ulyanovsk, L. Tolstoy St., 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0001-9937-8000.

Pogodina Evgeniya Sergeevna, Candidate of Sciences (Biology), Junior Researcher, Laboratory of Cellular and Molecular Biology, Research and Engineering Institute named after S.P. Kapitsa, Ulyanovsk State University. 432017, Russia, Ulyanovsk, L. Tolstoy St., 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0001-8183-5103.

Saenko Yuriy Vladimirovich, Doctor of Sciences (Biology), Leading Researcher, Laboratory of Cellular and Molecular Biology, Research and Engineering Institute named after S.P. Kapitsa, Ulyanovsk State University. 432017, Russia, Ulyanovsk, L. Tolstoy St., 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-4402-1482.

Antoneeva Inna Ivanovna, Doctor of Sciences (Medicine), Professor, Chair of Oncology and Radiation Diagnostics, Ulyanovsk State University. 432017, Russia, Ulyanovsk, L. Tolstoy St., 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-1525-2070.

Beloborodov Evgeniy Alekseevich, Junior Researcher, Laboratory of Cellular and Molecular Biology, Research and Engineering Institute named after S.P. Kapitsa, Ulyanovsk State University. 432017, Russia, Ulyanovsk, L. Tolstoy St., 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-5666-5154.

 

For citation

Khokhlova A.V., Poludnyakova L.V., Fedotova A.Yu., Stolyarov D.A., Gil'mutdinova A.K., Pogodina E.S., Saenko Yu.V., Antoneeva I.I., Beloborodov E.A. Vliyanie nizkointensivnogo lazernogo izlucheniya s dlinoy volny 1265 nm na uroven' aktivnykh form kisloroda i sistemu POL-AOZ v kul'turakh kletok CHO-K1 i A875 [Effect of low intensity laser therapy with (wavelength 1265 nm) on the level of active oxygen and lipid peroxidation-antioxidant system in CHO-K1 and A875 cells]. Ul'yanovskiy mediko-biologicheskiy zhurnal. 2020; 4: 122–132. DOI: 10.34014/2227-1848-2020-4-122-132 (in Russian).

 

Скачать статью

УДК 57.085.2

DOI 10.34014/2227-1848-2020-4-122-132

ВЛИЯНИЕ НИЗКОИНТЕНСИВНОГО ЛАЗЕРНОГО ИЗЛУЧЕНИЯ С ДЛИНОЙ ВОЛНЫ 1265 НМ НА УРОВЕНЬ АКТИВНЫХ ФОРМ КИСЛОРОДА И СИСТЕМУ ПОЛ – АОЗ В КУЛЬТУРАХ КЛЕТОК CHO-K1 И A875

 

А.В. Хохлова, Л.В. Полуднякова, А.Ю. Федотова, Д.А. Столяров, А.К. Гильмутдинова, Е.С. Погодина, Ю.В. Саенко, И.И. Антонеева, Е.А. Белобородов

ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный университет», г. Ульяновск, Россия

 

Ближнее инфракрасное лазерное излучение обладает значительно большей способностью проникать в живые ткани по сравнению с оптическим излучением видимого диапазона и нередко оказывает противоположное действие на нормальные и злокачественные клетки, являясь, таким образом, перспективным инструментом для терапии поверхностных новообразований. Однако механизмы, лежащие в основе взаимодействия лазера и биологических структур, могут иметь различную природу в силу выбранной длины волны, мощности и некоторых других параметров излучения.

Цель работы – исследовать влияние лазерного излучения с длиной волны 1265 нм в дозах 9,45–18,9 Дж/см2 на генерацию активных форм кислорода (АФК), уровень ферментов системы антиоксидантной защиты (АОЗ) и перекисного окисления липидов (ПОЛ) в нормальных и раковых клетках на примере линий эпителия яичника китайского хомячка CHO-K1 и меланомы человека A875.

Материалы и методы. Эксперимент выполнен на клеточных линиях CHO-K1 и A875, которые облучались источниками лазерного излучения с длиной волны 1265 нм, мощностью 4,2–100 мВт в течение 30–60 мин. Внутриклеточная концентрация АФК изучалась с помощью флуоресцентного окрашивания DCFH-DA, обработка изображений осуществлялась в программе ImageJ. Уровень продуктов ПОЛ и активность ферментов АОЗ определялись биохимическими методами. Статистическая обработка результатов проводилась с использованием U-критерия Манна–Уитни (p<0,05).

Результаты. В клетках линии CHO-K1 выявлено повышение уровня АФК, снижение активности супероксиддисмутазы и каталазы, а также снижение уровня малонового диальдегида. В клетках линии A875 установлено повышение активности каталазы и уровня малонового диальдегида.

Выводы. Лазерное излучение с длиной волны 1265 нм способствует усилению генерации АФК и угнетению системы ПОЛ – АОЗ в нераковой клеточной линии CHO-K1, в то время как в клетках меланомы A875 наблюдаются противоположные эффекты облучения.

Ключевые слова: культура клеток, рак, меланома, низкоинтенсивное лазерное излучение, инфракрасное лазерное излучение, окислительный стресс, митохондрии, активные формы кислорода, перекисное окисление липидов, антиоксидантная защита.

Работа выполнена при поддержке Российского фонда фундаментальных исследований (грант № 19-415-730003 р_а).

Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

 

Литература

  1. Gladfelter P., Darwish N.E., Mousa S.A. Current status and future direction in the management of malignant melanoma. Melanoma Res. 2017; 27 (5): 403–410.

  2. Каприн А.Д., Старинский В.В., Шахзадова А.О. Состояние онкологической помощи населению России в 2019 году. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена − филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России; 2020. 239.

  3. Гафтон Г.И., Анисимов В.В., Гельфонд М.Л., Семилетова Ю.В., Балдуева И.А., Нехаева Т.Л., Новик А.В., Мяснянкин М.Ю. Клинико-иммунологическая оценка эффективности неоадъювантной фотодинамической терапии в хирургическом лечении первичной меланомы кожи. Сибирский онкологический журнал. 2015; 2: 31–38.

  4. Peidaee P., Almansour N.M., Pirogova E. In vitro evaluation of low-intensity light radiation on murine melanoma (B16F10) cells. Med. Biol. Eng. Comput. 2016; 54 (2–3): 325–332.

  5. Chen Z., Li W., Hu X., Liu M. Irradiance plays a significant role in photobiomodulation of B16F10 melanoma cells by increasing reactive oxygen species and inhibiting mitochondrial function. Biomed. Opt. Express. 2019; 11 (1): 27–39.

  6. Ash C., Dubec M., Donne K., Bashford T. Effect of wavelength and beam width on penetration in light-tissue interaction using computational methods. Lasers Med. Sci. 2017; 32 (8): 1909–1918.

  7. Costa Carvalho J.L., de Brito A.A., de Oliveira A.P., de Castro Faria Neto H.C., Pereira T.M., de Carvalho R.A., Anatriello E., Aimbire F. The chemokines secretion and the oxidative stress are targets of low-level laser therapy in allergic lung inflammation. J. Biophotonics. 2016; 9 (11–12): 1208–1221.

  8. Firat E.T., Dağ A., Günay A., Kaya B., Karadede M.I., Kanay B.E., Ketani A., Evliyaoğlu O., Uysal E. The effects of low-level laser therapy on palatal mucoperiosteal wound healing and oxidative stress status in experimental diabetic rats. Photomed. Laser Surg. 2013; 31 (7): 315–321.

  9. Sokolovski S.G., Zolotovskaya S.A., Goltsov A., Pourreyron C., South A.P., Rafailov E.U. Infrared laser pulse triggers increased singlet oxygen production in tumour cells. Sci Rep. 2013; 3: 3484.

  10. Oliveira C.S., Turchiello R., Kowaltowski A.J., Indig G.L., Baptista M.S. Major determinants of photoinduced cell death: Subcellular localization versus photosensitization efficiency. Free Radic. Biol. Med. 2011; 51 (4): 824–833.

  11. Khokhlova A., Zolotovskii I., Stoliarov D., Vorsina S., Liamina D., Pogodina E., Fotiadi A., Saenko Y., Sokolovski S., Rafailov E. The Photobiomodulation of Vital Parameters of the Cancer Cell Culture by Low Dose of Near-IR Laser Irradiation. IEEE Journal of Selected Topics in Quantum Electronics. 2019; 25 (1): 1–10.

  12. McCloy R.A., Rogers S., Caldon C.E., Lorca T., Castro A., Burgess A. Partial inhibition of Cdk1 in G 2 phase overrides the SAC and decouples mitotic events. Cell Cycle. 2014; 13 (9): 1400–1412.

  13. Волчегорский В.А., Налимов А.Г., Яровинский Б.Г. Сопоставление различных подходов к определению продуктов перекисного окисления липидов в гептан-изопропаноловых экстрактах крови. Вопросы медицинской химии. 1989; 1: 127–131.

  14. Андреева Л.И., Кожемякин Л.А., Кишкун А.А. Модификация метода определения перекисей липидов в тесте с тиобарбитуровой кислотой. Лабораторное дело. 1988; 11: 41–43.

  15. Карпищенко А.И., ред. Медицинские лабораторные технологии: руководство по клинической лабораторной диагностике. Т. 2. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2013. 792.

  16. Асатиани В.С. Ферментные методы анализа. М.; 1969: 607–610.

  17. Nishikimi M., Appa N., Yagi K. The occurrence of superoxide anion in the reaction of reduced phenacinemethosulfate and molecular oxygen. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1972; 46: 849–854.

  18. Anquez F., Yazidi-Belkoura I., Randoux S., Suret P., Courtade E. Cancerous cell death from sensitizer free photoactivation of singlet oxygen. Photochem Photobiol. 2012; 88 (1): 167–174. 

  19. Saenko Y.V., Glushchenko E.S., Zolotovskii I.O., Sholokhov E., Kurkov A. Mitochondrial dependent oxidative stress in cell culture induced by laser radiation at 1265 nm. Lasers Med. Sci. 2016; 31 (3): 405–413.

  20. Khokhlova A., Zolotovskii I., Stoliarov D., Vorsina S., Liamina D., Pogodina E., Fotiadi A., Saenko Y., Sokolovski S., Rafailov E. Effects of high and low level 1265 nm laser irradiation on HCT116 cancer cells. Proc. SPIE. 2019; 10861: 108610L. DOI: 10.1117/12.2509529.

  21. Pastore D., Greco M., Passarella S. Specific helium-neon laser sensitivity of the purified cytochrome c oxidase. Int. J. Radiat. Biol. 2000; 76 (6): 863–870.

  22. Eells J.T., Wong-Riley M.T., Ver Hoeve J., Henry M., Buchman E.V., Kane M.P., Gould L.J., Das R., Jett M., Hodgson B.D., Margolis D., Whelan H.T. Mitochondrial signal transduction in accelerated wound and retinal healing by near-infrared light therapy. Mitochondrion. 2004; 4 (5–6): 559–567.

  23. Wong-Riley M.T., Liang H.L., Eells J.T., Chance B., Henry M.M., Buchmann E., Kane M., Whelan H.T. Photobiomodulation directly benefits primary neurons functionally inactivated by toxins: role of cytochrome c oxidase. J. Biol. Chem. 2005; 280 (6): 4761–4771.

  24. Gonzalez-Lima F., Auchter A. Protection against neurodegeneration with low-dose methylene blue and near-infrared light. Front. Cell Neurosci. 2015; 9: 179.

  25. Khokhlova A., Zolotovskii I., Sokolovski S., Saenko Y., Rafailov E., Stoliarov D., Pogodina E., Svetukhin V., Sibirny V., Fotiadi A. The light-oxygen effect in biological cells enhanced by highly localized surface plasmon-polaritons. Sci Rep. 2020; 10 (1): 1269. DOI: 10.1038/s41598-020-58159-4.

  26. Frigo L., Luppi J.S., Favero G.M., Durnavei A.M., Penna S.C., Bjordal J.M., Bensadoun R.J., Lopes-Martins R.A. The effect of low-level laser irradiation (In-Ga-Al-AsP – 660 nm) on melanoma in vitro and in vivo. BMC Cancer. 2009; 9: 404.

  27. Andreeva N.V., Yegorov Y.E., Belyavsky A.V., Zotov K.V., Yusupov V.I., Bagratashvili V.N., Kalashnikova M.V. The effect of infrared laser irradiation on the growth of human melanoma cells in culture. Biophysics. 2016; 61 (6): 979–984.

  28. Франциянц Е.М., Солдаткина Н.В., Орловская Л.А., Дашков А.В. Некоторые показатели свободнорадикальных процессов и антиокислительной системы ткани опухоли молочной железы и ее перифокальной зоны при различных вариантах течения рака. Опухоли женской репродуктивной системы. 2008; 2: 38–44.

  29. Khorsandi K., Kianmehr Z., Hosseinmardi Z., Hosseinzadeh R. Anti-cancer effect of gallic acid in presence of low level laser irradiation: ROS production and induction of apoptosis and ferroptosis. Cancer Cell Int. 2020; 20: 18.

Поступила в редакцию 10.09.2020; принята 09.10.2020.

 

Авторский коллектив

Хохлова Анна Вячеславовна – младший научный сотрудник лаборатории клеточной и молекулярной биологии НИТИ им. С.П. Капицы, ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный университет». 432017, Россия, г. Ульяновск, ул. Л. Толстого, 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-3976-8805.

Полуднякова Людмила Викторовна – кандидат биологических наук, доцент кафедры физиологии и патофизиологии, ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный университет». 432017, Россия, г. Ульяновск, ул. Л. Толстого, 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-1096-444X.

Федотова Антонина Юрьевна – ассистент кафедры физиологии и патофизиологии, ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный университет». 432017, Россия, г. Ульяновск, ул. Л. Толстого, 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0003-1027-8885.

Столяров Дмитрий Александрович – кандидат физико-математических наук, научный сотрудник лаборатории квантовой электроники и оптоэлектроники НИТИ им С.П. Капицы, ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный университет». 432017, Россия, г. Ульяновск, ул. Л. Толстого, 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0001-8635-2346.

Гильмутдинова Айгуль Камиловна – студент 4 курса экологического факультета, ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный университет». 432017, Россия, г. Ульяновск, ул. Л. Толстого, 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0001-9937-8000.

Погодина Евгения Сергеевна – кандидат биологических наук, младший научный сотрудник лаборатории клеточной и молекулярной биологии НИТИ им С.П. Капицы, ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный университет». 432017, Россия, г. Ульяновск, ул. Л. Толстого, 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0001-8183-5103.

Саенко Юрий Владимирович – доктор биологических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории клеточной и молекулярной биологии НИТИ им С.П. Капицы, ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный университет». 432017, Россия, г. Ульяновск, ул. Л. Толстого, 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-4402-1482.

Антонеева Инна Ивановна – доктор медицинских наук, профессор кафедры онкологии и лучевой диагностики, ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный университет». 4321017, Россия, г. Ульяновск, ул. Л. Толстого, 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-1525-2070.

Белобородов Евгений Алексеевич – младший научный сотрудник лаборатории клеточной и молекулярной биологии НИТИ им С.П. Капицы, ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный университет». 432017, Россия, г. Ульяновск, ул. Л. Толстого, 42; e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it., ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-5666-5154.

 

Образец цитирования

Хохлова А.В., Полуднякова Л.В., Федотова А.Ю., Столяров Д.А., Гильмутдинова А.К., Погодина Е.С., Саенко Ю.В., Антонеева И.И., Белобородов Е.А. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения с длиной волны 1265 нм на уровень активных форм кислорода и систему ПОЛ – АОЗ в культурах клеток CHO-K1 и A875. Ульяновский медико-биологический журнал. 2020; 4: 122–132. DOI: 10.34014/2227-1848-2020-4-122-132.