Download article
DOI 10.34014/2227-1848-2020-4-133-141
ACTIVITY OF SUPEROXIDE DISMUTASE, GLUTATHIONE PEROXIDASE, GLUCOSE-6-PHOSPHATE DEHYDROGENASE IN ERYTHROCYTES OF UNTRAINED RATS IN "TO-MUSCULAR-FAILURE" SWIMMING TEST
V.D. Shadrina, N.A. Vakhnina, E.R. Boyko
Institute of Physiology, Komi Scientific Center, Ural Branch of the Russian Academy of Sciences, Syktyvkar, Russia
For an untrained organism, physical activity is physiologically stressful. The stress is accompanied by an increase in reactive oxygen intermediates. Their level in the cell is regulated by antioxidant enzymes.
The aim of the paper to study the activity of superoxide dismutase (SOD), glutathione peroxidase (GP) and glucose-6-phosphate dehydrogenase (G-6-FDH) in erythrocytes under single physical load (FL) of different intensity.
Materials and Methods. The authors tested male Wistar rats aged 3 months. The animals were divided into seven groups: vivarium control (VC); rats who were swimming for 60 minutes without added weight (moderate intensity load (MIL)); four groups participating in load-testing: low-intensity FL (LI) – swimming with a load of 2 % of body weight; high-intensity FL (HI) - swimming with a load of 8 %, 10 % and
15 % of body weight (HI8, HI10, HI15). Animals of the seventh group (OS) were in the shallows for 60 min without the opportunity to swim in order to induce oxidative stress without physical load.
Results. In all groups, the authors observed a significant decrease in SOD activity and a significant increase in GP and G-6-FDH activity relative to VC. The greatest decrease in SOD activity was in the OS and MIL groups (by 36 % and 33.5 %, p<0.01). During load testing, MIL group demonstarted a decrease in SOD activity by 29 % (p<0.01), in HI groups - by 25%, 26% and 22 %, respectively (p<0.05). GP and G-6-FDH activity increased in all experimental groups (p<0.05), GP activity increased in OS group by 78 %, G-6-FDH activity increased in OS and MIL groups by 160 %.
Conclusion. When exposed to a single physical load of varying intensity, there was a decrease in SOD activity and an increase in GP and G-6-FDH activity relative to control. There were no differences in SOD and G-6-FDH activity between groups of swimming rats. There was a tendency to GP activity increase depending on the load intensity.
Keywords: superoxide dismutase, glutathione peroxidase, glucose-6-phosphate dehydrogenase, erythrocytes, physical load.
Conflict of interest. The authors declare no conflict of interest.
References
1. Datsenko A.V. Registratsiya pokazateley fizicheskoy vynoslivosti bioob"ektov pri bege na tredbane i plavanii s otyagoshcheniem s pomoshch'yu komp'yuternogo bezmarkernogo videotrekinga [Registration of indicators of physical endurance of biological objects when running on a treadmill and swimming with weights using computer markerless video tracking]. Saratovskiy nauchno-meditsinskiy zhurnal. 2014; 10 (4): 776–771 (in Russian).
2. Ji L.L., Leichtweis S. Exercise and oxidative stress sources of free radicals and their impact on antioxidant systems. Age. 1997; 20: 91–106.
3. Dubinina E.E. Produkty metabolizma kisloroda v funktsional'noy aktivnosti kletok (zhizn' i smert', sozidanie i razrushenie). Fiziologicheskie i kliniko-biokhimicheskie aspekty [Oxygen metabolism products in functional cell activity (life and death, creation and destruction). Physiological, clinical and biochemical aspects]. St. Petersburg: Meditsinskaya pressa; 2006. 400 (in Russian).
4. Meerson F.Z., Pshennikova M.G. Adaptatsiya k stressornym situatsiyam i fizicheskim nagruzkam [Adaptation to stressful situations and physical activity]. Moscow: Meditsina; 1988. 256 (in Russian).
5. Senturk U.K., Gunduz F., Kuru O., Aktekin M.R., Kipmen D., Yalcin O., Bor-Kucukatay M., Yesilkaya A.,Baskurt O.K. Exercise-induced stress affects erythrocytes in sedentary rats but not exercise-trained rats. J. Appl Physiol. 2001; 91: 1999–2004.
6. Kuhn V., Diederich L., Keller T.C.S., Kramer C.M., Lückstädt W., Panknin C., Suvorava T., Isakson B.E.,Kelm M., Cortese-Krott M.M. Red blood cell function and dysfunction: redox regulation, nitric oxide metabolism, anemia. Antioxidants Redox Signaling. 2017; 26 (13): 718–742. DOI: 10.1089/ars.2016.6954.
7. Arese P., Gallo V., Pantaleo A., Turrini F. Life and death of glucose-6-phosphate dehydrogenase (G6PD) deficient erythrocytes – role of redox stress and band 3 modifications. Transfus. Med. Hemother. 2012; 39: 328–334. DOI: 10.1159/000343123.
8. Stanojevici D., Jakovljevic V., Barudzic N., Zivkovic V., Srejovic I., Parezanovic Ilic K., Cubrilo D., Ahmetovic Z., PericD., Rosic M., Radovanovic D., Djordjevic D. Overtraining Does Not Induce Oxidative Stress and Inflammation in Blood and Heart of Rats. Physiol. Res. 2016; 65: 81–90.
9. Stone V., Kudo K.Y., Marcelino T.V., August P.M., Matte C. Swimming exercise enhances the hippocampal antioxidant status of female Wistar rats. Redox Report. 2015; 20: 133–138. DOI: 10.1179/1351000214Y.0000000116.
10. Sun Y., Cui D., Zhang Z., Zhang T., Shi J., Jin H., Ge Z., Ji L., Ding S. Attenuated oxidative stress following acute exhaustive swimming exercise was accompanied with modified gene expression profiles of apoptosis in the skeletal muscle of mice. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2016; 2016: Article ID 8381242. Available at: http://dx.doi.org/10.1155/2016/8381242 (Accessed: 15.03.2020).
11. Georgakouli K., Fatouros I.G., Draganidis D., Papanikolaou K., Tsimeas P., Deli C.K., Jamurtas A.Z. Exercise in Glucose-6-Phosphate Dehydrogenase Deficiency: Harmful or Harmless? A Narrative Review. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2019; 2019: 8060193.
12. Cherkas A., Holota S., Mdzinarashvili T., Gabbianelli R., Zarkovic N. Glucose as major antioxidant: when, what fjr and why it fails? Antioxidants. 2020; 9: 140. DOI: 10.3390/antiox9020140.
13. Brito A.F., Silva A.S., Souza I.L.L., Pereira J.C., Silva B.A. Intensity of swimming exercise influences aortic reactivity in rats. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. 2015; 48 (11): 996–1003.
14. Karkishchenko N.N., Karkishchenko V.N., Shustov E.B., Berzin I.A., Kapanadze G.D., Fokin Yu.V., Semenov Kh.Kh., Stankova N.V., Bolotova V.Ts. Biomeditsinskoe (doklinicheskoe) izuchenie lekarstvennykh sredstv, vliyayushchikh na rabotosposobnost': metodicheskie rekomendatsii [Biomedical (preclinical) study of drugs affecting performance: Guidelines]. Moscow; 2014. 134 (in Russian).
15. Galaktionova L.P., Molchanov A.V., El'chaninova S.A. Sostoyanie perekisnogo okisleniya u bol'nykh s yazvennoy bolezn'yu zheludka i dvenadtsatiperstnoy kishki [Peroxidation in patients with gastric and duodenal ulcer]. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika. 1998; 6: 10–14 (in Russian).
16. Moin V.M. Prostoy i spetsificheskiy metod opredeleniya aktivnosti glutationperoksidazy v eritrotsitakh [Simple and specific method to determine glutathione peroxidase activity in erythrocytes]. Laboratornoe delo. 1986; 12: 724–727 (in Russian).
17. Uchida K., Kawakishi S. Identification of oxidized hisidine generated at the active site of Cu, Zn-superoxide dismutase exposed to H2O2. selective generation of 2-oxo-histidine at the histidine 118. J. Biol. Chem. 1994; 269 (4): 2405–2410.
18. Kang J.H. Modification and inactivation of Cu, Zn-superoxide dismutase by the lipid peroxidation product, acrolein. BMB Rep. 2013; 46 (11): 555–560. DOI: 10.5483/BMBRep.2013.46.11.138.
19. Dick T.P., Ralser М. Metabolic Remodeling in Times of Stress: Who Shoots Faster than His Shadow? Molecular Cell. 2015; 59: 519–521. Available at: http://dx.doi.org/10.1016/j.molcel.2015.08.002 (Accessed: 15.03.2020).
20. Makeeva A.V., Lushchik M.V., Bolotskikh V.I., Popova T.N. Regulyatsiya aktivnosti glyukozo-6-fosfatdegidrogenazy na fone razvitiya toksicheskogo gepatita i ekzogennogo deystviya lipoevoy kisloty [Regulation of glucose-6-phosphate dehydrogenase activity associated with toxic hepatitis development and exogenous action of lipoic acid]. Vestnik novykh meditsinskikh tekhnologiy. 2018; 3. DOI: 10.24411/2075-4094-2018-16035 (in Russian).
21. Bogdanova O.V., Kanekara S., D̀. Ancid K.E.D., Renshawa P.F. Factors influencing behavior in the forsed swim test. Physiol. Behav. 2013; 118: 227–239.
22. Qin L., Yao Z., Chang Q., Zhao Y., Liu N., Zhu X., Liu Q., Wang L., Yang A., Gao C., Li J. Swimming attenuates inflammation, oxidative stress and apoptosis in a rat model of dextran sulfate sodium- induced chtonic colitis. Oncotarget. 2017; 8 (5): 7391–7404.
23. Radak Z., Zhao Z., Koltai E., Ohno H., Atalay M. Oxygen consumption and usage during physical exercise: the balance between oxidative stress and ROS-dependent adaptive signaling. Antioxidants Redox Signaling. 2013; 18 (10): 1208–1246. DOI: 10.1089/ars.2011.4498.
24. Balykin M.V., Sagidova S.A., Zharkov A.V. Izmeneniya gazovogo sostava krovi i protsessy svobodnoradikal'nogo okisleniya lipidov v miokarde pri adaptatsii k fizicheskim nagruzkam [Changes in blood gas composition and free radical oxidation of lipids in the myocardium during adaptation to physical load]. Rossiyskiy fiziologicheskiy zhurnal im. I.M. Sechenova. 2015; 101 (9): 1007–1012 (in Russian).
25. Kawamura T., Muraoka I. Exercise-induced oxidative stress and the effects of antioxidant intake from a physiological viewpoint. Antioxidants. 2018; 7: 119. DOI: 10.3390/antiox7090119.
26. Ammar A., Trabelsi K., Boukhris O., Glenn J.M, Bott N., Masmoudi L., Hakim A., Chtourou H., Driss T., Hoekelmann A., Abed K.E.L. Effects of aerobic-, anaerobic- and combined-based exercises on plasma oxidative stress Biomarkers in healthy untrained young adults. Int. J. Environ. Res. Public Health. 2020; 17 (7): 2601.
27. Johnson B.D., Padilla J., Wallace J.P., Johnson B.D. The exercise dose affects oxidative stress and brachial artery flow-mediated dilation in trained men. Eur. J. Appl. Physiol. 2012; 112: 33–42. DOI: 10.1007/s00421-011-1946-8.
Received 24 July 2020; accepted 18 October 2020.
Information about the authors
Shadrina Vera Dmitrievna, Candidate of Sciences (Biology), Researcher, Department of Environmental and Medical Physiology, Institute of Physiology, Komi Scientific Center, Ural Branch of the Russian Academy of Sciences. 167982, Russia, Republic of Komi, Syktyvkar, GSP-2, Pervomayskaya St., 50; e-mail: Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра., ORCID ID: http://orcid.org./0000-0002-4553-6218.
Vakhnina Nadezhda Alekseevna, Candidate of Sciences (Biology), Senior Researcher, Department of Environmental and Medical Physiology, Institute of Physiology, Komi Scientific Center, Ural Branch of the Russian Academy of Sciences. 167982, Russia, Republic of Komi, Syktyvkar, GSP-2, Pervomayskaya St., 50; e-mail: Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра., ORCID ID: http://orcid.org./0000-0002-0779-5171.
Boyko Evgeniy Rafailovich, Doctor of Sciences (Medicine), Professor, Department of Environmental and Medical Physiology, Institute of Physiology, Komi Scientific Center, Ural Branch of the Russian Academy of Sciences. 167982, Russia, Republic of Komi, Syktyvkar, GSP-2, Pervomayskaya St., 50; e-mail: Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра., ORCID ID: http://orcid.org./0000-0002-8027-898X.
For citation
Shadrina V.D., Vakhnina N.A., Boyko E.R. Aktivnost' superoksiddismutazy, glutationperoksidazy, glyukozo-6-fosfatdegidrogenazy v eritrotsitakh netrenirovannykh krys v plavatel'nom teste «do otkaza» [Activity of superoxide dismutase, glutathione peroxidase, glucose-6-phosphate dehydrogenase in erythrocytes of untrained rats in “to-muscular-failure” swimming test]. Ul'yanovskiy mediko-biologicheskiy zhurnal. 2020; 4: 133–141. DOI: 10.34014/2227-1848-2020-4-133-141 (in Russian).
Скачать статью
УДК 612.111:577.15:796.015.6
DOI 10.34014/2227-1848-2020-4-133-141
АКТИВНОСТЬ СУПЕРОКСИДДИСМУТАЗЫ, ГЛУТАТИОНПЕРОКСИДАЗЫ, ГЛЮКОЗО-6-ФОСФАТДЕГИДРОГЕНАЗЫ В ЭРИТРОЦИТАХ НЕТРЕНИРОВАННЫХ КРЫС В ПЛАВАТЕЛЬНОМ ТЕСТЕ «ДО ОТКАЗА»
В.Д. Шадрина, Н.А. Вахнина, Е.Р. Бойко
Институт физиологии Коми научного центра Уральского отделения Российской академии наук, г. Сыктывкар, Россия
Для нетренированного организма физическая нагрузка – это физиологический стресс, сопровождающийся увеличением активных форм кислорода, уровень которых в клетке регулируется ферментами – антиоксидантами.
Цель – исследование активности супероксиддисмутазы (СОД), глутатионпероксидазы (ГП) и глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы (Г-6-ФДГ) эритроцитов при воздействии однократной физической нагрузкой (ФН) разной интенсивности.
Материалы и методы. Работа выполнена на трехмесячных самцах крыс линии Wistar. Животные разделены на семь групп: виварный контроль (ВК); плававшие 60 мин без дополнительного веса (нагрузка умеренной интенсивности (УН)); четыре группы участвующих в нагрузочном тестировании: низко интенсивная ФН (НИ) – плавание с грузом 2 % от массы тела, высоко интенсивная (ВИ) – плавание с грузом 8, 10 и 15 % от массы тела (ВИ8, ВИ10, ВИ15). Животные седьмой группы (ОС) в течение 60 мин находились на мелководье без возможности плавать, чтобы вызвать окислительный стресс без физической нагрузки.
Результаты. Во всех группах наблюдалось значимое снижение активности СОД и значимое повышение активности ГП и Г-6-ФДГ относительно ВК. Наибольшее снижение активности СОД показано в группах ОС и УН (на 36 и 33,5 %, p<0,01). При нагрузочном тестировании в группе УН отмечалось снижение активности СОД на 29 % (p<0,01), в группах ВИ – на 25, 26 и 22 % соответственно (p<0,05). Активность ГП и Г-6-ФДГ повышена во всех экспериментальных группах (p<0,05), активность ГП повышена в группе ОС на 78 %, Г-6-ФДГ – в группах ОС и УН на 160 %.
Выводы. При воздействии однократной физической нагрузкой разной интенсивности наблюдается снижение активности СОД и повышение активности ГП, Г-6-ФДГ относительно контроля. Не выявлены различия активности СОД и Г-6-ФДГ между группами плававших крыс; показана тенденция к повышению активности ГП в зависимости от интенсивности нагрузки.
Ключевые слова: супероксиддисмутаза, глутатионпероксидаза, глюкозо-6-фосфатдегидрогеназа, эритроциты, физическая нагрузка.
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Литература
1. Даценко А.В. Регистрация показателей физической выносливости биообъектов при беге на тредбане и плавании с отягощением с помощью компьютерного безмаркерного видеотрекинга. Саратовский научно-медицинский журнал. 2014; 10 (4): 776–771.
2. Ji L.L., Leichtweis S. Exercise and oxidative stress sources of free radicals and their impact on antioxidant systems. Age. 1997; 20: 91–106.
3. Дубинина Е.Е. Продукты метаболизма кислорода в функциональной активности клеток (жизнь и смерть, созидание и разрушение). Физиологические и клиникo-биохимические аспекты. СПб.: Медицинская пресса; 2006. 400.
4. Меерсон Ф.З., Пшенникова М.Г. Адаптация к стрессорным ситуациям и физическим нагрузкам. М.: Медицина; 1988. 256.
5. Senturk U.K., Gunduz F., Kuru O., Aktekin M.R., Kipmen D., Yalcin O., Bor-Kucukatay M., Yesilkaya A., Baskurt O.K. Exercise-induced stress affects erythrocytes in sedentary rats but not exercise-trained rats. J. Appl Physiol. 2001; 91: 1999–2004.
6. Kuhn V., Diederich L., Keller T.C.S., Kramer C.M., Lückstädt W., Panknin C., Suvorava T., Isakson B.E., Kelm M., Cortese-Krott M.M. Red blood cell function and dysfunction: redox regulation, nitric oxide metabolism, anemia. Antioxidants Redox Signaling. 2017; 26 (13): 718–742. DOI: 10.1089/ars.2016.6954.
7. Arese P., Gallo V., Pantaleo A., Turrini F. Life and death of glucose-6-phosphate dehydrogenase (G6PD) deficient erythrocytes – role of redox stress and band 3 modifications. Transfus. Med. Hemother. 2012; 39: 328–334. DOI: 10.1159/000343123.
8. Stanojevici D., Jakovljevic V., Barudzic N., Zivkovic V., Srejovic I., Parezanovic Ilic K., Cubrilo D., Ahmetovic Z., PericD., Rosic M., Radovanovic D., Djordjevic D. Overtraining Does Not Induce Oxidative Stress and Inflammation in Blood and Heart of Rats. Physiol. Res. 2016; 65: 81–90.
9. Stone V., Kudo K.Y., Marcelino T.V., August P.M., Matte C. Swimming exercise enhances the hippocampal antioxidant status of female Wistar rats. Redox Report. 2015; 20: 133–138. DOI: 10.1179/1351000214Y.0000000116.
10. Sun Y., Cui D., Zhang Z., Zhang T., Shi J., Jin H., Ge Z., Ji L., Ding S. Attenuated oxidative stress following acute exhaustive swimming exercise was accompanied with modified gene expression profiles of apoptosis in the skeletal muscle of mice. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2016; 2016: Article ID 8381242. URL: http://dx.doi.org/10.1155/2016/8381242 (дата обращения: 15.03.2020).
11. Georgakouli K., Fatouros I.G., Draganidis D., Papanikolaou K., Tsimeas P., Deli C.K., Jamurtas A.Z. Exercise in Glucose-6-Phosphate Dehydrogenase Deficiency: Harmful or Harmless? A Narrative Review. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2019; 2019: 8060193.
12. Cherkas A., Holota S., Mdzinarashvili T., Gabbianelli R., Zarkovic N. Glucose as major antioxidant: when, what fjr and why it fails? Antioxidants. 2020; 9: 140. DOI: 10.3390/antiox9020140.
13. Brito A.F., Silva A.S., Souza I.L.L., Pereira J.C., Silva B.A. Intensity of swimming exercise influences aortic reactivity in rats. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. 2015; 48 (11): 996–1003.
14. Каркищенко Н.Н., Каркищенко В.Н., Шустов Е.Б., Берзин И.А., Капанадзе Г.Д., Фокин Ю.В., Семенов Х.Х., Станкова Н.В., Болотова В.Ц. Биомедицинское (доклиническое) изучение лекарственных средств, влияющих на работоспособность: методические рекомендации. Москва; 2014. 134.
15. Галактионова Л.П., Молчанов А.В., Ельчанинова С.А. Состояние перекисного окисления у больных с язвенной болезнью желудка и двенадцатиперстной кишки. Клиническая лабораторная диагностика. 1998; 6: 10–14.
16. Моин В.М. Простой и специфический метод определения активности глутатионпероксидазы в эритроцитах. Лабораторное дело. 1986; 12: 724–727.
17. Uchida K., Kawakishi S. Identification of oxidized hisidine generated at the active site of Cu, Zn-superoxide dismutase exposed to H2O2. selective generation of 2-oxo-histidine at the histidine 118. J. Biol. Chem. 1994; 269 (4): 2405–2410.
18. Kang J.H. Modification and inactivation of Cu, Zn-superoxide dismutase by the lipid peroxidation product, acrolein. BMB Rep. 2013; 46 (11): 555–560. DOI: 10.5483/BMBRep.2013.46.11.138.
19. Dick T.P., Ralser М. Metabolic Remodeling in Times of Stress: Who Shoots Faster than His Shadow? Molecular Cell. 2015; 59: 519–521. URL: http://dx.doi.org/10.1016/j.molcel.2015.08.002 (дата обращения: 15.03.2020).
20. Макеева А.В., Лущик М.В., Болотских В.И., Попова Т.Н. Регуляция активности глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы на фоне развития токсического гепатита и экзогенного действия липоевой кислоты. Вестник новых медицинских технологий. 2018; 3. DOI: 10.24411/2075-4094-2018-16035.
21. Bogdanova O.V., Kanekara S., D̀. Ancid K.E.D., Renshawa P.F. Factors influencing behavior in the forsed swim test. Physiol. Behav. 2013; 118: 227–239.
22. Qin L., Yao Z., Chang Q., Zhao Y., Liu N., Zhu X., Liu Q., Wang L., Yang A., Gao C., Li J. Swimming attenuates inflammation, oxidative stress and apoptosis in a rat model of dextran sulfate sodium- induced chtonic colitis. Oncotarget. 2017; 8 (5): 7391–7404.
23. Radak Z., Zhao Z., Koltai E., Ohno H., Atalay M. Oxygen consumption and usage during physical exercise: the balance between oxidative stress and ROS-dependent adaptive signaling. Antioxidants Redox Signaling. 2013; 18 (10): 1208–1246. DOI: 10.1089/ars.2011.4498.
24. Балыкин М.В., Сагидова С.А., Жарков А.В. Изменения газового состава крови и процессы свободнорадикального окисления липидов в миокарде при адаптации к физическим нагрузкам. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2015; 101 (9): 1007–1012.
25. Kawamura T., Muraoka I. Exercise-induced oxidative stress and the effects of antioxidant intake from a physiological viewpoint. Antioxidants. 2018; 7: 119. DOI: 10.3390/antiox7090119.
26. Ammar A., Trabelsi K., Boukhris O., Glenn J.M, Bott N., Masmoudi L., Hakim A., Chtourou H., Driss T., Hoekelmann A., Abed K.E.L. Effects of aerobic-, anaerobic- and combined-based exercises on plasma oxidative stress Biomarkers in healthy untrained young adults. Int. J. Environ. Res. Public Health. 2020; 17 (7): 2601.
27. Johnson B.D., Padilla J., Wallace J.P., Johnson B.D. The exercise dose affects oxidative stress and brachial artery flow-mediated dilation in trained men. Eur. J. Appl. Physiol. 2012; 112: 33–42. DOI: 10.1007/s00421-011-1946-8.
Поступила в редакцию 24.07.2020; принята 18.10.2020.
Авторский коллектив
Шадрина Вера Дмитриевна – кандидат биологических наук, научный сотрудник отдела экологической и медицинской физиологии, Институт физиологии Коми научного центра Уральского отделения Российской академии наук. 167982, Россия, Республика Коми, г. Сыктывкар, ГСП-2, ул. Первомайская, 50; e-mail: Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра., ORCID ID: http://orcid.org./0000-0002-4553-6218.
Вахнина Надежда Алексеевна – кандидат биологических наук, старший научный сотрудник отдела экологической и медицинской физиологии, Институт физиологии Коми научного центра Уральского отделения Российской академии наук. 167982, Россия, Республика Коми, г. Сыктывкар, ГСП-2,
ул. Первомайская, 50; e-mail: Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра., ORCID ID: http://orcid.org./0000-0002-0779-5171.
Бойко Евгений Рафаилович – доктор медицинских наук, профессор, отдел экологической и медицинской физиологии, Институт физиологии Коми научного центра Уральского отделения Российской академии наук. 167982, Россия, Республика Коми, г. Сыктывкар, ГСП-2, ул. Первомайская, 50; e-mail: Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра., ORCID ID: http://orcid.org./0000-0002-8027-898X.
Образец цитирования
Шадрина В.Д., Вахнина Н.А., Бойко Е.Р. Активность супероксиддисмутазы, глутатионпероксидазы, глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы в эритроцитах нетренированных крыс в плавательном тесте «до отказа». Ульяновский медико-биологический журнал. 2020; 4: 133–141. DOI: 10.34014/2227-1848-2020-4-133-141.